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伊红染色液(0.5%)采用进口原料和特殊防腐剂，操作简单，不使用汞、甲醇等有毒试剂，可以用于组织切片或培养细胞的染色，可以和免疫荧光染色或免疫组化染色配合使用。一方面可以在伊红染色后进行免疫荧光染色或其它染料的染色，另一方面也可以在免疫组化染色后再进行伊红复染，该染色液可以重复使用，直至认为效果不佳时再换用新的染色液，染色后细胞浆呈粉红色或红色。该试剂仅用于科研领域，不适用于临床诊断或其他用途。

伊红(Eosin)又称曙红，属人工合成染料中的呫吨类染料，为桃红色或粉红色的粉末，分子式为C20H6O5Br4Na2，分子量为691.86。伊红最适宜与苏木精配合染色以显示正常或病理组织的形态结构，水溶性伊红Y含有一个醌型苯环的发色团和两个形成钠盐的酸性助色团(R-COONa、R-ONa)。这种形成盐类的酸性染料在水中溶解时解离为带负电荷的色酸部分(R-COO-、R-O-)即染料的有色部分和带正电荷的钠离子部分(Na+)，染色时伊红Y带负电荷的色酸部分与组织内带正电荷的物质以离子键的形式结合而显色。

• 二甲苯或环保浸蜡脱蜡透明液、盐酸乙醇分化液、改良Lillie-Mayer苏木素染色液
  
• 系列乙醇、自来水或蒸馏水、中性树胶
  
• 蓝化液，如稀氨水、碳酸锂溶液等
  
• 固定液，如中性福尔马林固定液、乙醚-乙醇混合固定液、4%多聚甲醛等
  
• 普通光学显微镜、载玻片、盖玻片等

• 切片脱蜡应尽量干净；系列乙醇应经常更换新液。
  
• 盐酸乙醇分化时间应根据切片厚薄、组织类别以及新旧而定，另外分化后自来水冲洗时间应该足够，以便彻底清洗酸。
  
• 乙醚-乙醇混合固定液是由乙醚和95%乙醇等量混合而得，再加入适量乙酸，密闭保存。
  
• 冷冻切片染色时间尽量要短。
  
• 蓝化液常使用0.2～1%氨水或Scott促蓝液或0.1～1%碳酸锂溶液。
  
• 试剂开封后请尽快使用，以防影响后续实验效果。
  
• 为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。

• 石蜡切片染色
  
  • 切片脱蜡至水
    ① 二甲苯或浸蜡脱蜡透明液(GL2755)作用2次，每次5～10min。
    ② (可选)无水乙醇作用2次，每次3～5min。
    ③ 95%乙醇3～5min
    ④ 90%乙醇3～5min
    ⑤ 80%乙醇3～5min
    ⑥ 自来水或蒸馏水(亦可用30～40℃温水)冲洗1～3min
    
  • 染色
    ① 苏木素染色液染色3～8min
    ② 自来水或蒸馏水冲洗5～10s
    ③ (可选)盐酸乙醇分化2～5s
    ④ 自来水冲洗20～30s
    ⑤ 蓝化液或温水返蓝20～40s
    ⑥ 80%乙醇脱水30～60s
    ⑦ 伊红染色液(水溶)染色20s～180s
    
  • 脱水、透明、封固
    ① 80%乙醇10～20s
    ② 90%乙醇10～20s
    ③ 95%乙醇作用2次，每次1～2min。
    ④ 无水乙醇作用2次，每次2～3min。
    ⑤ 二甲苯或浸蜡脱蜡透明液(GL2755)透明3次，每次2～3min。
    ⑥ 中性树胶封片。
• 冰冻切片染色
  
  • 乙醚-乙醇混合固定液5～10s
    
  • 自来水冲洗2～5s
    
  • 苏木素染色液滴染1～2min(可加热至50℃)。
    
  • 自来水冲洗2～5s
    
  • (可选)盐酸乙醇分化2～5s
    
  • 自来水冲洗2～5s
    
  • 蓝化液或温水返蓝2～5s
    
  • 80%乙醇脱水5～10s
    
  • 伊红染色液(醇溶)染色2～5s
    
  • 80%乙醇1～2s
    
  • 95%乙醇1～2s
    
  • 无水乙醇2～5s
    
  • 苯酚二甲苯(1:3) 2～5s
    
  • 二甲苯或浸蜡脱蜡透明液(GL2755)透明3次，每次2～5s。
    
  • 中性树胶封片。
• 细胞染色
  
  • 4%多聚甲醛固定10～20min。
    
  • 自来水冲洗2次，每次2min。
    
  • 蒸馏水冲洗2次，每次2min。
    
  • 染色、脱蜡、透明、封固步骤同石蜡切片的染色步骤，作用时间应相应缩短。